انتشار الطفيليات في عينات التربة من المناطق العامة في غرب الزاوية، ليبيا
DOI:
https://doi.org/10.65405/79r1v751الكلمات المفتاحية:
الطفيليات، طريقة التعويم، التربة، الانتشار، غرب الزاوية، ليبياالملخص
هدفت هذه الدراسة إلى تحديد مدى انتشار جميع أشكال الطفيليات (البيض، واليرقات، والأكياس، والبويضات المتكيسة) باستخدام طريقتين للطفو في تربة من أماكن عامة وحدائق مجانية في مدينة الزاوية الغربية، ليبيا. خلال الفترة من 2025 إلى 2026، جُمعت 160 عينة تربة من مواقع مختلفة باستخدام طريقة الاختيار العشوائي البسيط. لاستخلاص الطفيليات، فُحصت عينات التربة باستخدام طريقة الطفو بنترات الصوديوم وطريقة الطفو بالسكروز. استُخدم اختبار ماكنيمار ومؤشر كابا لتحليل الدلالة الإحصائية للنتائج.
كان انتشار طفيليات التربة كما يلي: بيض طفيليات التوكسوكارا (Toxocara spp.) في طريقة الطفو بنترات الصوديوم (42.7%) وفي طريقة الطفو بالسكروز (37%)، وطفيليات الإيزوسبورا (Isospora spp.). في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (14.7%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (22.7%)، يرقات الديدان الأسطوانية في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (44.7%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (28%)، أنواع الإيميريا في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (12.7%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (28.7%)، أكياس الكوكسيديا وأنواع الساركوسيستيس في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (18%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (40%)، ديكروسيليوم ديندريتيكوم في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (6.7%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (6%)، الديدان المعوية في طريقة التعويم بنترات الصوديوم (10.7%) وفي طريقة التعويم بالسكروز (7.4%).
علاوة على ذلك، بعد تطبيق طريقة التعويم بالسكروز، تم استخدام تقنية تلوين زيل-نيلسن المعدلة، حيث تم الكشف عن بويضات طفيلية من جنس كريبتوسبوريديوم في 19 عينة (14%) من عينات التربة. وأظهر اختبار ماكنيمار وجود فروق دالة إحصائيًا بين طريقتي التعويم بالسكروز ونترات الصوديوم في الكشف عن الطفيليات.
التنزيلات
المراجع
Altman G (1992). Practical Statistics for Medical Research. Chapman and Hall, London.
Dubin S, Segall S, Martindale J (1975). Contamination of soil in two city parks with canine nematode ova including Toxocara canis: a preliminary study. Am. J. Public Health, 65(11): 1242-1245.
Fayer R, Leek RG (1984). The effects of reducing conditions, medium, pH, temperature, and time on in vitro excystation of Cryptosporidium.J. Protozool. 31(4): 567-569.
John D, Petri W (2006). Examinations of stool specimens. In: Markell EK, Voge M, editors. Medical Parasitology. 9th Ed Saunders: Missouri, pp. 393-415.
Mandarino-Pereira A, de Souza FS, Lopes CWG, Pereira MJS (2010). Prevalence of parasites in soil and dog feces according to diagnostic tests. Vet. Parasitol, 170(1-2): 176-181.
Mawdsley JL, Brooks AE, Merry RJ (1996). Movement of the protozoan pathogen Cryptosporidium parvum through three contrasting soil types. Biol. Fertil. Soils, 21(1-2): 30-36.
Mizgajska-Wiktor H (2005). Recommended method for recovery of Toxocara and other geohelminth eggs from soil. Wiad Parazytol. 51(1): 21-22.
Mohamed, A. R. A., & Sirtiyah, A. M. A. (2023). A Field Study to Evaluate the Efficacy of Changing the Type of Anthelmintic on Nematodes in Sheep in the Western Area of Libya. African Journal of Advanced Pure and Applied Sciences, 200-205.
Motazedian H, Mehrabani D, Tabatabaee SH, Pakniat A, Tavalali M (2006). Prevalence of helminth ova in soil samples from public places in Shiraz. East Mediterr. Health J. 12(5): 562-565.
Nunes M C, Sinhorini I L, Ogassawara S (1994). Influence of soil texture in the recovery of Toxocara canis eggs by a flotation method. Vet. Parasitol. 53(3-4): 269-274.
Ogbe MG, Edet E, Isichel NN (2002). Intestinal helminth infection in primary school children in areas of operation of shell petroleum development company of Nigeria (SPDC), western division in delta state. Nig. J. Parasitiol. 23(1): 3-10.
Paul AJ, Todd Jr. KS, Dipietro JA (1988). Environmental contamination by eggs of Toxocara species. Vet. Parasitol. 26(3-4): 339-342.
Rai SK, Uga S, Ono K, Rai G, Matsumura T (2000). Contamination of soil with helminth parasite eggs in Nepal. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health, 31(2): 388-393.
Hamron, A. M., Barakat, A. H., Qaed, H. M., & Emran, F. (2026). Evaluation of the antifungal efficacy of Salvia officinalis extract against some clinical oral candidiasis isolates: a comparative study with standard antifungals. Al-Farooq Journal of Sciences, 2(1), 1242-1252.
Saathoff E, Olsen A, Kvalsvig JD, Geissler WP (2002). Geophagy and its association with geohelminth infection in rural schoolchildren from northern KwaZulu-Natal, South Africa. Trans. R Soc. Trop. Med. Hyg. 96(5): 485-490.
Storey GW, Phillips RA (1985). The survival of parasite eggs throughout the soil profile. Parasitology, 91(3): 585-590.
Tiyo R, Guedes TA, Falavigna DLM, Falavigna-Guilherme AL (2008). Seasonal contamination of public squares and lawns by parasites with zoonotic potential in southern Brazil. J. Helminthol. 82(1): 1-6.
Uga S, Ohkawa H, Amin-Babjee SM, Rai SK (1996). Contamination of soil with parasite eggs in and around Kuala Lumpur, Malaysia. Jpn. J. Trop. Med. Hyg. 24: 125-127.
Waenlor W, Wiwanitkit V (2007). Soil examination for soil-transmitted parasite: Importance and experience from Thailand. J. Ped. Inf. Dis. 2(1): 11-13.
Zibaei M, Abdollahpour F, Birjandi M, Firoozeh F (2010). Soil contamination with Toxocara spp. eggs in the public parks from three areas of Khorram Abad, Iran. Nepal Med. Coll. J. 12(2): 63-65.
